Principales enfermedades / plagas y señales que generan.

Varroa destructor (ácaro)
• Efectos: debilitamiento, transmisión de virus (p. ej. DWV), aumento de mortalidad y deformidades.
• Señales observables: aumento de mortandad de forrajeadoras, reducción de retorno de abejas, presencia de abejas con alas deformes, cambios locales de temperatura en cría por actividad infecciosa. Estudios muestran que técnicas como termografía y sensores (gas/e-nose) pueden identificar alteraciones asociadas a parasitismo y estrés en el nido. (PMC)
Nosema spp. (microsporidio intestinal)
• Efectos: diarrea incolora, debilidad, reducción de forrajeo y longevidad.
• Señales observables: descenso sostenido de actividad de entrada/salida, reducción de eficacia forrajera; su diagnóstico definitivo se basa en microscopía o técnicas moleculares (microscopía para esporas sigue siendo referencia). Sensores ambientales no detectan Nosema directamente, pero patrones de actividad y condiciones microclimáticas (humedad/temperatura) pueden indicar riesgo y disparar muestreos. (MDPI)
American Foulbrood (Paenibacillus larvae) y European Foulbrood (Melissococcus plutonius)
• Efectos: mortalidad de cría, olor característico (en AFB), desorganización de la colonia.
• Señales observables: reducción del volumen de cría sana, aspecto anómalo de larvas; la visión por imágenes de panales y análisis de imágenes de cría puede ayudar a identificar patrones compatibles (investigaciones recientes exploran clasificación por imagen). Confirmación: laboratorio. (Nature)
Chalkbrood (Ascosphaera apis)
• Efectos: mermas en cría por micosis; favorecido por humedad alta y temperaturas no óptimas.
• Señales observables: aumento de humedad en nido y presencia de larvas momificadas — condiciones de temperatura/humedad son determinantes para su desarrollo (alto RH + temperatura inadecuada aumentan riesgo). Sensores de T/RH internos detectan condiciones propicias y pueden activar inspección visual. (PMC)
Small hive beetle, polillas de la cera y otros vectores
• Efectos: consumo de miel, daño físico, estrés en colonia.
• Señales observables: actividad nocturna inusual, daño en panales, aumento de movimientos nerviosos — cámaras de vigilancia en entrada y dentro del colmenar ayudan a identificar invasiones. (researchers.westernsydney.edu.au)
Virus (ej. Deformed wing virus — DWV)
• Efectos: alas deformes, pérdida de vuelo.
• Señales observables: detección por cámara de abejas con deformidades; reducción de tráfico y comportamientos anormales. Confirmación: laboratorio (PCR). (PMC)

2) Qué pueden detectar las cámaras (visuales y termales)
Cámaras visuales + visión por computadora
• Conteo de tráfico (entradas/salidas) y relación forrajeo/retorno — indicador de estrés o pérdida de fuerza. Estudios muestran que el conteo automático detecta caídas de actividad antes de que el apicultor note pérdida significativa. (research.utwente.nl)
• Detección de abejas con deformidades (alas, tamaño) mediante modelos de clasificación de imágenes (ensayos recientes detectan larvas enfermas y alteraciones morfológicas). (Nature)
• Identificación de comportamientos anómalos (p. ej. agitación, flujo errático) que suelen preceder a eventos críticos (enjambrazón, robo, presencia de intrusos).

Cámaras térmicas (termografía)
• Detectan anomalías térmicas en el nido: pérdidas de calor en áreas de cría, focos calientes por infecciones o inflamaciones locales, y cambios de termorregulación causados por pérdida de población o enfermedad. Se ha usado para identificar parasitismo en cría y fallos en homestasis térmica. (PMC)
Limitaciones de cámaras
• Visión afectada por iluminación, suciedad, cobertura; cámaras internas requieren protección ambiental.
• Muchas enfermedades requieren confirmación (p. ej. cultivos, microscopía, PCR) — las cámaras son sensores de alerta temprana, no diagnóstico final. (Nature)

3) Qué pueden indicar sensores de temperatura y humedad
Temperatura (T)
• La cría requiere 34–36 °C; variaciones sostenidas fuera de ese rango indican problemas de termorregulación (pérdida de población, enfermedad, robos, fallas en ventilación). Caídas bruscas en T de cámara interna son correlato de pérdida de cría o de abandono. Estudios y sistemas comerciales usan umbrales térmicos para alertar. (ResearchGate)
Humedad relativa (RH)
• Alto RH (>80%) en panales sellados favorece micosis como chalkbrood; variaciones inusuales pueden indicar ventilación deficiente o problemas de humedad en el sitio. Estudios controlados muestran relación entre RH y desarrollo de chalkbrood. (PMC)
Patrones útiles (combinación T+RH)
• T baja + RH alta en cría sellada → riesgo aumentado de chalkbrood o mala ventilación.
• T fluctuante (día/noche con amplitudes exageradas) → estrés térmico en colonia, posible debilidad o infestación (ej. Varroa asociado con cambios de metabolismo).
• Algoritmos que mezclan T, RH, peso y actividad permiten detectar eventos críticos (pérdida de población, enjambrazón, infestaciones). (MDPI)
Limitaciones de sensores T/RH
• No dan diagnóstico etiológico; son indicadores indirectos. Necesitan calibración, ubicación correcta (centro de cámara de cría) y comparaciones históricas para reducir falsos positivos.

4) Otros sensores complementarios probados en la literatura
• Gas sensors / “electronic nose”: detección de perfiles de VOCs (compuestos orgánicos volátiles) en aire de colmena que cambian con infestaciones (Varroa) o enfermedades; estudios muestran clasificación prometedora mediante arrays de sensores y ML. (ScienceDirect)
• Peso (balanza de colmena): descenso brusco o patrón extraño indica pérdida de población o robo; útil combinado con T/RH y cámara. (Paradigm)
• Sonido/vibración: análisis espectral registra cambios en zumbido de colonia asociados a enjambrazón, reina perdida o estrés. (PMC)

5) Recomendaciones prácticas para Api Health (implementación)
Hardware / ubicación
• Cámaras de entrada: colocadas a la altura de la entrada, campo de visión amplio para conteo y reconocimiento de morfología; iluminación controlada (evita contraluces).
• Cámara interior o termal: en marco lateral a la pila de cría (no dentro del panal) o termómetro infrarrojo apuntando a zona de cría; termal fija con rango radiométrico suficiente.
• Sensor T/RH: ubicar en el centro del nido (sobre marco de cría), protegido de contacto directo con abejas y sin obstrucción de panales.
• Geolocalizador/antena: fuera del cerco metálico, con buena exposición.
• Batería/panel solar: dejar corriente estable para cámara y transmisiones puntuales.
Software / alertas
• Definir umbrales y reglas (ejemplos):
o Alerta T: si T media en cría < 32 °C por > 6 h → inspección urgente.
o Alerta RH: si RH > 80% y T < 32 °C → riesgo de chalkbrood.
o Alerta actividad: caída de tráfico > 40% vs baseline en 24 h → posible intox/robo/envenenamiento.
o Alerta morfología: > X abejas con alas deformes detectadas → muestreo de DWV/Varroa.
• Implementar ML/visión por computador para conteo de tráfico y detección de anomalías; usar ventana temporal (horaria/diaria) y comparativa histórica para reducir ruido. (research.utwente.nl)
Protocolos de verificación
• Siempre validar alertas con inspección física y, para enfermedades específicas, con muestreos de laboratorio (microscopía para Nosema, cultivo/PCR para foulbroods, recuento de ácaros Varroa). Sensores y cámaras deben usarse como sistema de triage y alerta temprana, no como reemplazo de diagnóstico. (MDPI)
Mantenimiento
• Calibrar sensores periódicamente (cada 6 meses).
• Limpiar lente de cámaras y mantener paneles solares libres de polvo.
• Registrar metadatos (hora, T ambiente, firmware) para trazabilidad.

6) Limitaciones y consideraciones éticas / operativas
• Falsos positivos y negativos: las señales ambientales y de comportamiento no son específicas; algoritmos deben entrenarse con datos locales.
• Privacidad: grabaciones de video requieren políticas claras (foro/consentimiento) si se almacenan.
• Costo-beneficio: combinar varias fuentes (cámara + T/RH + peso) aumenta fiabilidad pero también costo energético y de implementación. (MDPI)

7) Fuentes clave (selección para lectura y citación)
1. Sipos, T. et al. (2024). Tracking Varroa Parasitism Using Handheld Infrared... — termografía aplicada a parasitismo. (PMC)
2. Zaman, A., et al. (2023). A framework for better sensor-based beehive health — E-nose/gas sensor arrays y clasificación para Varroa. (ScienceDirect)
3. Mráz, P., et al. (2021). Effect of temperature and humidity of sealed brood on chalkbrood development — relación T/RH con chalkbrood. (PMC)
4. Padubidri, C., et al. (2024). The Be-Hive Project — Counting Bee Traffic Based on Deep Learning — conteo y monitoreo de tráfico por visión. (research.utwente.nl)
5. Szabó, I., et al. (2025). An Overview of the Most Commonly Used Methods for Nosema detection — microscopía como estándar para Nosema. (MDPI)
(En la conversación he usado investigaciones y revisiones recientes que demuestran un interés activo en combinar cámaras, T/RH, gas sensors y ML para crear sistemas de alerta temprana en apicultura.)